ARN polimerasa dependiente de ARN

La ARN polimerasa dependiente de ARN o ARN replicasa abreviada como RdRP es una enzima propia de los virus de ARN que cataliza la replicación del ARN a partir de una plantilla de ARN. Específicamente, cataliza la síntesis de la hebra de ARN complementaria a una plantilla de ARN determinada. Esto contrasta con las típicas ARN polimerasas dependientes de ADN, que todos los organismos celulares utilizan para catalizar la transcripción de ARN a partir de una plantilla de ADN. La enzima esta presente en todos los virus de ARN y algunos organismos celulares infectados por virus de ARN.[1][2]

ARN polimerasa dependiente de ARN viral.

HistoriaEditar

Las RdRPs se descubrieron en la década de 1960 a partir de estudios sobre el Mengovirus y el virus de la polimielitis cuando se observó que estos virus no fueron sensibles a la actinomicina D, un fármaco que inhibe la síntesis de ARN celular catalizada por ADN. Esta falta de sensibilidad sugirió que existe una enzima específica del virus que podría copiar ARN de una plantilla de ARN y no de una plantilla de ADN.[1]

Origen e importacia evolutivaEditar

 
Transiciones del mundo de ARN incluyendo los virus.
 
Esquema de una RdRP unida a una cadena de ARN.

Las RdRPs son las únicas enzimas proteicas capaces de transcribir exclusivamente ARN por lo que se ha postulado que las RdRPs pudieron ser las primeras enzimas proteicas que aparecieron en la Tierra y que posteriormente dieron origen a las enzimas que transcriben ADN. Según esta propuesta las RdRPs serían reliquias vivas del mundo de ARN al igual que las ribozimas, aunque las RdRP se derivarían de las ribozimas. Las RdRPs se englobarían en la segunda etapa del mundo de ARN denominada mundo de ARN + proteínas junto con los ribosomas que sintetizan ARN y proteínas.[3][4][5][6]​ La enzima es universal de los virus de ARN y permite estudiar toda la evolución de los virus de ARN y sus relaciones de parentesco. Por tanto el origen de los virus de ARN es inseparable del origen de las RdRPs. Esto sugiere que los virus de ARN especialmente los bacteriófagos de ARN se originaron en los tiempos precelulares y que probablemente fueron parte del viroma de las primeras formas de vida. Posteriormente los bacteriófagos de ARN darían lugar a todos los virus de ARN que infectan actualmente eucariotas.[7]​ La taxonomía del Comité Internacional de Taxonomía de Virus para los virus de ARN esta basada en análisis filogenéticos de la secuencia de la RdRP.[2]

Las RdRPs son estructuralmente similares a las transcriptasas inversas y las telomerasas, sin embargo las similitudes pueden ser una plesiomorfía por su carácter ancestral. Análisis filogenéticos de las polimerasas virales y celulares han sugerido que las telomerasas exclusiva de los eucariotas se derivan de las RdRPs cuando se produjeron las primeras infecciones por virus de ARN en eucariotas.[8]​ Las RdRPs también están presentes en algunos eucariotas que según los análisis filogenéticos fueron heredadas de los virus de ARN por infección viral.[9]​ En los tiempos precelulares se sugirió que las RdRPs precedieron a las transcriptasas inversas que serían las primeras enzimas en convertir el ARN en ADN dando origen últimamente a las restantes polimerasas como las ADN polimerasas. De esta manera las transcriptasas inversas y los elementos genómicos procariotas que codifican transcriptasas inversas serían los "inventores del ADN".[6][3][5][10]

DescripciónEditar

ReplicaciónEditar

Estructura y replicación de la RdRP.

Las RdRPs catalizan la síntesis de la hebra de ARN complementaria a una plantilla de ARN determinada. El proceso de replicación del ARN es un mecanismo de dos pasos. En primer lugar, el paso de inicio de la síntesis de ARN comienza en o cerca del extremo 3 'de la plantilla de ARN por medio de un cebador independiente (de novo), o un mecanismo dependiente del cebador que utiliza un cebador vinculado al genoma de la proteína viral (VPg). La iniciación de novo consiste en la adición de un nucleósido de trifosfato (NTP) al 3'-OH del primer NTP iniciador. Durante la siguiente fase denominada de elongación, esta reacción de transferencia de nucleotidilo se repite con los NTP posteriores para generar el producto de ARN complementario.[11][12]

EstructuraEditar

 
Estfuctura de la enzima.

Las ARN polimerasas dependientes de ARN, junto con muchas polimerasas dirigidas por ADN de subunidad única, emplean un pliegue cuya organización se ha comparado con la forma de una mano derecha con tres subdominios denominados dedos, palma y pulgar. Solo el subdominio de la palma, compuesto por una hoja beta antiparalela de cuatro hebras con dos hélices alfa, está bien conservado entre todas estas enzimas. En la RdRP, el subdominio de la palma comprende tres motivos bien conservados (A, B y C). El motivo A (Dx (4,5) -D) y el motivo C (GDD) están puestos espacialmente; los residuos de ácido aspártico de estos motivos están implicados en la unión de Mg 2+ y / o Mn 2+. El residuo del motivo B está involucrado en la selección de trifosfatos de ribonucleósidos sobre dNTP y por tanto, determina si se sintetiza ARN en lugar de ADN. Se conservan la organización del dominio y la estructura 3D del centro catalítico de una amplia gama de RdRP, incluso aquellos con una homología de secuencia generalmente baja. El centro catalítico está formado por varios motivos que contienen varios residuos de aminoácidos conservados.[13]

RecombinaciónEditar

En los poliovirus que son virus de ARN monocatenario positivo recombinación parece ocurrir por un mecanismo de elección de copia en el que RdRP cambia las plantillas de ARN monocatenario positivo durante la síntesis de la hebra negativa. La frecuencia de recombinación está determinada en parte por la fidelidad de replicación de la RdRP. Las variantes de RdRP con alta fidelidad de replicación muestran una recombinación reducida, y las RdRps de baja fidelidad exhiben una mayor recombinación.[14]​ La recombinación por el cambio de hebra de RdRP también ocurre con frecuencia durante la replicación en los fitovirus de ARN monocatenario positivo carmovirus y tombusvirus.[15]

Complementación intragénicaEditar

Los virus de la familia Paramyxoviridae son virus de ARN monocatenario negativo con genoma lineales y no segmentados. La RdRP viral de estos virus consta de dos subunidades codificadas por virus, una P más pequeña y una L más grande. Cuando se probaron diferentes mutantes RdRP inactivos con defectos en toda la longitud de la subunidad L en combinaciones de pares, se observó restauración de la síntesis del ARN viral en algunos casos de combinaciones. Esta interacción LL positiva se conoce como complementación intragénica e indica que la proteína L es un oligómero en el complejo de la ARN polimerasa viral.[16]

ReferenciasEditar

  1. a b Koonin EV, Gorbalenya AE, Chumakov KM (July 1989). «Tentative identification of RNA-dependent RNA polymerases of dsRNA viruses and their relationship to positive strand RNA viral polymerases». FEBS Letters 252 (1–2): 42-6. PMID 2759231. doi:10.1016/0014-5793(89)80886-5. 
  2. a b Zanotto PM, Gibbs MJ, Gould EA, Holmes EC (September 1996). «A reevaluation of the higher taxonomy of viruses based on RNA polymerases». Journal of Virology 70 (9): 6083-96. PMC 190630. PMID 8709232. doi:10.1128/JVI.70.9.6083-6096.1996. 
  3. a b Eugene Koonin, Valerian V Doljja (2014). A virocentric perspective on the evolution of life. Science Direct.
  4. Eugene Koonin, Valerian V Doljja (2014). Virus World as an Evolutionary Network of Viruses and Capsidless Selfish Elements. Microbiology and Molecular Biology Reviews.
  5. a b Eugene V Koonin, Tatiana G Senkevich, Valerian V Dolja (2006). The ancient Virus World and evolution of cells. Biology Direct.
  6. a b Eugene Koonin (2015). Viruses and mobile elements as drivers of evolutionary transitions. NCBI.
  7. Mart Krupovic, Valerian V. Dolja, Eugene V. Koonin (2020). The LUCA and its complex virome. Nature.
  8. Suttle CA (September 2005). «Viruses in the sea». Nature 437 (7057): 356-61. Bibcode:2005Natur.437..356S. PMID 16163346. doi:10.1038/nature04160. 
  9. Iyer LM, Koonin EV, Aravind L (January 2003). «Evolutionary connection between the catalytic subunits of DNA-dependent RNA polymerases and eukaryotic RNA-dependent RNA polymerases and the origin of RNA polymerases». BMC Structural Biology 3: 1. PMC 151600. PMID 12553882. doi:10.1186/1472-6807-3-1. 
  10. Patrick Forterre. The Two Ages of the RNA World, and the Transition to the DNA World: A Story of Viruses and Cells. Science Direct.
  11. Jin Z, Leveque V, Ma H, Johnson KA, Klumpp K (March 2012). «Assembly, purification, and pre-steady-state kinetic analysis of active RNA-dependent RNA polymerase elongation complex». The Journal of Biological Chemistry 287 (13): 10674-83. PMC 3323022. PMID 22303022. doi:10.1074/jbc.M111.325530. 
  12. Kao CC, Singh P, Ecker DJ (September 2001). «De novo initiation of viral RNA-dependent RNA synthesis». Virology 287 (2): 251-60. PMID 11531403. doi:10.1006/viro.2001.1039. 
  13. Hansen JL, Long AM, Schultz SC (August 1997). «Structure of the RNA-dependent RNA polymerase of poliovirus». Structure 5 (8): 1109-22. PMID 9309225. doi:10.1016/S0969-2126(97)00261-X. 
  14. Kirkegaard K, Baltimore D (November 1986). «The mechanism of RNA recombination in poliovirus». Cell 47 (3): 433-43. PMC 7133339. PMID 3021340. doi:10.1016/0092-8674(86)90600-8. 
  15. Cheng CP, Nagy PD (November 2003). «Mechanism of RNA recombination in carmo- and tombusviruses: evidence for template switching by the RNA-dependent RNA polymerase in vitro». Journal of Virology 77 (22): 12033-47. PMC 254248. PMID 14581540. doi:10.1128/jvi.77.22.12033-12047.2003. 
  16. Forrest D, James K, Yuzenkova Y, Zenkin N (June 2017). «Single-peptide DNA-dependent RNA polymerase homologous to multi-subunit RNA polymerase». Nature Communications 8: 15774. Bibcode:2017NatCo...815774F. PMC 5467207. PMID 28585540. doi:10.1038/ncomms15774.